-
zgtools是一款自主编写的模块集合软件，其中包含了超过100个模块用于处理常规基因组与T2T基因组，其涵盖Survey、组装、HIC、T2T、注释、进化分析、着丝粒预测以及多种个性化分析功能。该软件旨在通过一个统一的启动器来管理所有基因组分析任务，相较于nextflow流程，它提供了更高的灵活性。
-
zgtools结合一百多个基因组的运行经验，对许多标准分析流程进行了优化，并实现了自动化更新，其目标是实现“更快、更准、更好”的分析效果。
-
目前zgtools已经完成了十多个物种的T2T组装，并将相关成果发表在了HR、NC等期刊上。对于绝大部分植物、哺乳动物以及鱼类（包括含有ZW/XY性染色体的物种），zgtools能够轻松实现T2T组装，并提供完整的PAR（PAR指“伪常染色体区域”）。
-
对于300M至1G大小的基因组，从基因组的Survey、组装到HIC的整个流程，zgtools只需3至7天即可完成。同样地，对于300M至1G大小的基因组，从T2T组装、Gap填补、端粒延伸修补到评估的整个流程，zgtools也只需7至14天。
-
此外，这是一个【个人项目】，目前暂不开源，但也提供科研咨询服务。其他方面，如果您需要HIC调图教程或测序服务，也可通过QQ【1954616586】与我联系。
T2T组装流程图：
重复序列注释流程图：
①HIFI数据，12000一个Cell，保底80g，一般可以测到90g；如果需要测少量的HIFI，即散测。散测费用是建库2000，测序180/g；
②HIC数据，一个文库4000，测序10/g；
③ONT数据，默认N50:100K，目前11000一个Cell，单个Cell产出植物15G，哺乳动物20G以上，水产和昆虫这些暂不承诺；
④二代数据：提取建库110，测序10/G；
zgtools达到的T2T水平：
①0 Gap：最基本的要求；
②全端粒：每条染色体末端端粒重复次数大于100次（一般1000次以上比较好)；
③全rDNA：有rDNA末端的染色体也完善出端粒；
④全着丝粒：整个基因组准确鉴定着丝粒。
结果文件请见示例【example】，要求作图与结果均达到CNS水平。
01、T2T端粒延伸+Gap填补+T2T纠错+T2T各项评估
02、Survey分析+倍型分析+二代/三代NT比对去污染
03、常规基因组组装/分型基因组组装/T2T基因组组装（端粒延伸、补Gap、全rDNA和动物T2T-Y染色体的PAR区）+各项评估
04、HiCUP评估（HiC小测/HiC大测）+HiC挂载调图+染色体级别基因组生成+HiC热图+未挂载区去冗余+共线性分析+各项评估
05、Subphaser亚基因组分型+亚基因组特有分析（SV分析/等位基因表达不平衡分析/亚基因组优势分析/KaKs差异分析）
06、LAI评估+LTR插入时间分析+LTR-RTs系统发育树（最大似然法）
07、着丝粒预测（优于目前已发表的所有生信鉴定着丝粒软件）
08、重复基因鉴定+KaKs分析+功能富集
09、圈图、基因共线性
10、注释与进化(待更新)
11、多倍体T2T流程(更新中)
运行zgtools subphaser进行分析，填写配置文件运行即可，原软件SubPhaser写的很好，我们只在原基础上修改了配色和添加图例，结果如下：
运行zgtools plotCCR进行分析，检查重复序列的分布得到候选着丝粒区域，结果如下：
运行zgtools GetTwoSyn进行syri的切分并行分析，展示基因组共线性（基因共线性建议JCVI）和染色体间的SV：INV（黄色）、TRANS（绿色）和 Dup（蓝色）。以【T2T骏枣 】的chr5和chr12染色体的移位为例，结果如下：
基因共线性圈图：
运行zgtools run_centromere获得着丝粒的候选区域后，可运行zgtools StainedGlass进行可视化，该模块在原代码的基础上进行修改，加速运行而支持更方便的并行，对于结果文件也进行了精简，对于着丝粒区域的可视化运行速度大大提升。示例结果如下：
使用zgtools mdifgap进行多重数据填补Gap后，仍有填补不上的结果，通过Juicebox检查发现，Gap的邻近区域存在600k的冗余序列，故而仅依靠Reads是无法填补的，由此引入zgtools gapjoin模块，通过对Gap区域左右拓展一定区域，对该区域进行比对检查是否存在重复的部分。筛选高Coverage和长比对区域并限制基因组损失的极限值，将Gap区域附近的冗余删除进而连接起来，实现填补Gap的目的，最后绘制Reads覆盖图进一步检查。示例如下：
使用zgtools genomecheck对基因组（包含未挂载区的序列）进行端粒、Gap和rDNA的鉴定，由此可以①获得基因组的染色体部分的初步端粒情况；②结合未挂载区的端粒与rDNA，可以回捞端粒回染色体部分，比如示例图中的Scaffold19可以通过检查Juicebox图加回至chr3上游的45rDNA末端或者chr8下游的45rDNA末端；③检测是否有端粒序列被其他序列遮挡住，如图中chr6上游的遮掩标识（绿色三角形）表示附近的序列被邻近的序列遮挡，返回Juicebox检查发现前一序列是该序列的冗余部分。
首先，使用zgtools工具集中的syntenic和genomesyn功能进行共线性分析。这一过程将产生基因组共线性图以及名为Ref_vs_Query.syri.out的变异检测结果文件。随后，对SV（结构变异）进行长度过滤，仅保留长度大于500,000bp的SV，并从中提取SV的起始和终止位置信息。接着，利用minimap2工具将HIFI数据和ONT数据回比到基因组上。在此基础上，我们对已确定的SV位置进行左右两侧各拓展5,000bp的处理。之后，批量绘制这些区域的Reads覆盖图，并自动检测Reads的覆盖情况。示例图如下：
多基因组共线性图，无数量上限，图中黑三角为端粒，黄三角为组装的 Gap 序列（T2T基因组则没有），浅蓝色为 5S_rDNA，深蓝色为 45S_rDNA，Syntenic 为共线性区域，Inversion 为倒位区域，Translocation 为易位区域，Duplication为重复区域。
测试：对TR富集或者LTR富集的植物，以及TR和LTR都比较少的鱼类进行测试，结果很不错，相较于quarTeT和CentIER都有很大的提升：使用TRF软件鉴定串联重复序列，筛选重复次数>100，单元长度>100bp的TR序列，基于社区检测算法，以80%相似度进行构建TR相似性网络，对筛选的单体序列进行重鉴定，对TE和TR高覆盖的区域进行筛选整合，得到着丝粒核心区和近着丝粒区，以下是其中鱼类的测试结果：
测试：500M基因组17个gap和2G基因组5个gap，分别用时13分钟和5分钟，填补速度非常快，消耗内存非常小，有补gap绘制reads覆盖图检查HIC调图是否有问题和补gap后对新区域进行reads验证检查是否有问题。目前来说其他软件：
①TGS-Gapcloser很容易给基因组补出许多序列，补gap前后可能多出好几M，其次缺点还有就是容易爆内存。
②quarTeT的补gap也有问题，效果差，补完gap，多出100多M也不说了。如果实在要补gap还是用TGS-Gapcloser吧，慢慢跑，慢慢补应该不会爆内存。其他的例如，LR-gapcloser也效果不是很好。
使用 winnowmap2/minimap2 将补洞数据（不含N）与基因组 Gap 区间比对（含N），该步骤分为三个水平对 Gap 进行填补，其优先级为：其他基因组版本>HIFI数据>ONT数据。①其他版本基因组为组装的各版本ctg级别基因组，除primary嵌合体以外，还包括hap1和hap2的基因组；②HIFI数据即环化后的 HIFI 数据；③ONT数据可以为经过纠错后的一致性序列，比如nextdenovo生成的cns序列，也可以是经过HERRO模型纠错后的R10数据。zgtools mdifgap将会进行每种数据做三轮Gap填补，最多进行9轮Gap填补。
左图为ONT数据填补的结果；中间图为HIFI数据填补的结果；右图为其他组装版本填补的结果。如图所示，由于HIFI数据一般比较短，在一些Gap区域，往往需要通过“搭桥”的形式通过Gap替换区域的两端，对于一些复杂的Gap区域，ONT序列也可能需要“搭桥”通过。最理想的情况为右图，原Gap周围没有复杂的冗余与未切断序列，可以被很好的填补上。
获得 0 Gap的基因组后通过端粒鉴定，发现端粒有不完整的时，开始进行端粒修补，此时，使用homotelo模块，原理是将其他组装版本与0 Gap基因组进行比较，基于高质量的共线性与其他限制性参数对基因组末端进行末端替换，homotelo的末端替换不只限于端粒的替换，还能够检查当前T2T骨架版本是否有未装出来的部分，生成.hic文件，导入Juicebox验证准确性。如果还有修补失败的末端，再使用zgtools homorDNA和zgtools telofix进行rDNA与三代数据的端粒延伸。
蜗牛图（Snail Plot），其主要是根据 Scaffold 的（或 Contigs）N50/N90 指标，QV 评估结果以及 BUSCO 评估结果，对基因组组装质量进行直观的可视化展示，结果如下图所示：
注: 端粒/rDNA分布预览图中, 末端的绿色为端粒基序重复次数大于100的端粒, 深蓝色为45 rDNA, 浅蓝色为5S rDNA, 红色为Gap.
①展示所有共线性
后续更新...